1.真空采血管的硅化質(zhì)量
用于試管內(nèi)壁處置的硅油有許多品種，有溶于水和不溶于水的，有溶于有機溶液和不溶于有機溶液的，粘度有很簡單活動的液體和半固態(tài)狀的液體。其間要選出適用于采血管內(nèi)壁處置，具有杰出的化學(xué)慵懶和生理慵懶的硅油絕非一件易事。硅化處置較好的試管，內(nèi)壁應(yīng)該是十分潤滑的。經(jīng)過簡略的過水試驗，就能區(qū)分試管內(nèi)壁處置的好壞。行將2毫升的水放入試管然后倒出，硅化處置好的試管內(nèi)壁是*渙散的小水珠殘留在上面。那么可想而知，沒有血細胞掛壁表象的真空管現(xiàn)已為別離出高質(zhì)量的血清打下了杰出的根底。
2.EDTA-K2增加的均勻程度對血常規(guī)成果的影響
因為玻璃管在安全性能上存有很大危險，故當(dāng)前運用特種塑料PET試管代替玻璃管成為一種趨勢。因為PET試管有著杰出的疏水性，很大程度上加大了真空管的出產(chǎn)難度。*，當(dāng)在PET試管內(nèi)增加液體的EDTA-K2溶液時，因為PET試管的疏水性，一段時間后液態(tài)的EDTA-K2因為水分的有些丟失，會在試管底部、管口或其他部位構(gòu)成塊狀結(jié)晶，使其的溶解度大大的下降。大塊的EDTA-K2結(jié)晶因為不能在短時間內(nèi)充沛與血液觸摸并溶于血標(biāo)本，這樣就簡單發(fā)生血小板集合，白細胞分類成果不抱負，乃至呈現(xiàn)血標(biāo)本有些凝結(jié)等。咱們曉得，全血細胞剖析所選用的EDTA-K2抗凝劑其*濃度為1.5～2.2mg/1ml全血。如EDTA-K2濃度太低，抗凝強度不行，則呈現(xiàn)血小板集合表象；EDTA-K2濃度太高，尤其是有大塊的EDTA-K2結(jié)晶存在時，使部分的血細胞處于高滲狀況，此處細胞會呈現(xiàn)暫時的縮短，這樣會招致白細胞分類成果不抱負等。為了避免因水分丟失而構(gòu)成的結(jié)晶表象，一個抱負的血常規(guī)真空采血管，EDTA-K2晶體應(yīng)該是十分細微均勻地散布在試管內(nèi)壁。這樣一旦血液進入試管，均勻散布的EDTA-K2就能迅速地跟血液充沛混勻，然后杜絕了血常規(guī)成果因真空采血管的緣由而呈現(xiàn)異常的表象。
3.別離膠與促凝劑的運用評估
別離膠促凝管是病院真空管運用zui遍及的一種管子，但要做好這種管子也不簡單。評估別離膠促凝管質(zhì)量好壞要害在以下幾個方面：①用同一份血液標(biāo)本，跟空白管做比對，某些離子含量能否會存在誤差。②將收集好含別離膠的血標(biāo)本管子放在水溫箱里，溫度調(diào)到38～39℃，待血標(biāo)本充沛凝結(jié)后，離心，然后查看血清中能否有油滴發(fā)生。因為油滴可對生化儀探針形成喪命的阻塞，已有許多報導(dǎo)，關(guān)于這種表象的存在。③掃除不正確的采血辦法所形成的溶血要素，因為低質(zhì)的出產(chǎn)工藝，別離膠或促凝劑所殘留的有機溶劑是損壞血液標(biāo)本的首惡。這種損壞往往表如今標(biāo)本有較多的溶血表象，在血清中心漂浮著別離膠顆粒。別的值得一提的是包含國外真空管聞名公司在內(nèi)都聲明血凝管或促凝劑別離膠在收集血標(biāo)本放置半個小時后離心，這樣能很大程度上保證成果的準(zhǔn)確性。
4.避免真空采血管內(nèi)的液體霉變
用于血凝和血沉的枸櫞酸鈉抗凝劑試管，出產(chǎn)時對環(huán)境及用于溶解的水需求適當(dāng)高。若是工藝和出產(chǎn)環(huán)境不妥，或所用的溶解水純度沒到達需求等，那么出產(chǎn)出來的產(chǎn)物在一段時間后試管內(nèi)的枸櫞酸鈉溶液就會有絮狀物發(fā)生（長霉菌），然后形成查驗成果失真。因為PET管有很好的疏水性，此類管子非特別包裝，主張在三個月內(nèi)用完。
來源：離心機網(wǎng)
